1. Indications/Utilisations
- Évaluer les maladies trachéales et des voies aériennes inférieures
- Obtenir des échantillons (lavage bronchoalvéolaire)
- Retirer les corps étrangers
2. Contre-indications
- État instable du patient ne tolérant pas l'anesthésie
- Troubles significatifs de la coagulation
- Obstruction trachéale partielle
- Asthme instable
- Hypertension pulmonaire
3. Matériel
- Endoscope flexible: 2,5–6 mm de diamètre, 50–80 cm de longueur
- Équipement de visualisation endoscopique
- Spray anesthésique topique
- Ouvre-bouche
- Connecteur coudé (Figure B.41) : Utilisé pour connecter le tube endotrachéal (tube ET) au circuit respiratoire, permettant l'insertion de l'endoscope tout en administrant de l'oxygène et des anesthésiques volatils.
- Oxymètre de pouls
- Instruments d'extraction de corps étrangers : Pinces (y compris les types à panier, à dents de rat, à alligator, à filet et à anse à polype)
3.1 Bronchoscope
Le
bronchoscope est un endoscope à fibre optique d'un diamètre de 3,5 à 6,0 mm et d'une longueur de travail d'au moins 55 cm. C'est une taille typique pour les bronchoscope humains, et un endoscope de 5 mm de diamètre convient à la plupart des tailles de chiens.
Les chats nécessitent des মিথ্যা bronchoscopes plus étroits pour l'endoscopie. Un endoscope de 55 cm de longueur de travail peut être trop court pour examiner complètement les bronches lobaires des grands chiens.
Des endoscopes vétérinaires plus longs sont disponibles pour résoudre ce problème, mais des gastroscopes/duodénoscopes peuvent également être utilisés. Bien que ces endoscopes puissent avoir jusqu'à 8 mm de diamètre, l'obstruction des voies respiratoires est relative en raison de la plus grande taille des chiens.
Une limitation de l'utilisation d'endoscopes de plus de 55 cm de longueur avec un diamètre <6 mm ou de tailles plus étroites est que les images sont souvent moins claires en raison du plus petit nombre de fibres optiques transmettant la lumière. Une avancée récente abordant ce problème est le développement des vidéobronchoscopes.
Figure 1 : Connexion du tube endotrachéal au circuit respiratoire à l'aide d'un adaptateur coudé.
4. Préparation et positionnement de l'animal
L'anesthésie par inhalation est recommandée ; cependant, l'intubation ne doit être effectuée que si l'endoscope peut passer facilement à travers le tube endotrachéal, permettant le mouvement simultané de l'air et de l'endoscope. Un adaptateur coudé peut être utilisé pour fournir une anesthésie gazeuse continue pendant que l'endoscope passe à travers le tube endotrachéal.
Si l'endoscope ne peut pas passer à travers le tube endotrachéal, une anesthésie intraveineuse doit être utilisée. Pour réduire le risque d'hypoxémie, un apport d'oxygène supplémentaire peut être administré parallèlement au bronchoscope via un cathéter urinaire ou un autre type de cathéter fin et flexible. Un débit de 1 à 3 litres par minute peut être utilisé en toute sécurité.
La pré-oxygénation est très bénéfique, surtout si l'oxygénation est altérée. Elle peut être administrée par cathéter nasal d'oxygène ou par masque facial.
Le patient doit être placé en position ventrale, la tête surélevée et le cou en extension (Figure B.42). Cependant, certains cliniciens préfèrent la position latérale car elle facilite la manipulation, l'insertion et la manœuvre de l'endoscope.
Un bâillon buccal est essentiel pour maintenir la bouche ouverte et empêcher l'endoscope d'être mordu en raison du réflexe nauséeux déclenché par le contact de l'endoscope avec le pharynx.
Figure 2 : Position couchée de l'animal pour la bronchoscopie. L'intubation doit être retirée et l'endoscope inséré directement dans la trachée, sauf si un endoscope de très petit diamètre est utilisé.
4.1 Avertissement
Une prudence supplémentaire est requise lorsque l'endoscope est placé dans les voies respiratoires sans apport d'oxygène, car une hypoxémie sévère peut survenir. Par conséquent, la saturométrie pulsée doit être étroitement surveillée. De plus, l'endoscope peut interférer avec la ventilation, entraînant une hypercapnie, une hyperventilation pulmonaire, un traumatisme et un bronchospasme.
5. Considérations spéciales pour les chats
Les chats nécessitent des soins supplémentaires lors de la bronchoscopie car leurs voies respiratoires sont particulièrement sujettes au bronchospasme.
La procédure doit être effectuée aussi rapidement que possible pour minimiser le traumatisme.
En raison de la susceptibilité des chats au laryngospasme, de la lidocaïne doit être pulvérisée sur le larynx avant l'intubation. Les cliniciens doivent attendre 30 à 60 secondes pour que la lidocaïne anesthésie le larynx, puis insérer le tube délicatement ; l'intubation ne doit être effectuée que lorsque le larynx est ouvert, en utilisant un mouvement de torsion.
Si vous utilisez un spray commercial de lidocaïne topique, les cliniciens doivent être conscients de la dose délivrée par pompe, car une utilisation répétée peut entraîner une toxicité. Une dose de 1 mg/kg de lidocaïne à 2 % est appropriée pour les chats (c'est-à-dire environ 0,2 ml pour un chat de 4 kg).
Pour réduire le risque de bronchospasme, la terbutaline (0,015 mg/kg par voie sous-cutanée ou intramusculaire) peut être administrée environ 30 minutes avant la bronchoscopie. L'effet commence entre 15 et 30 minutes, ce qui peut généralement être observé par une augmentation de la fréquence cardiaque.
La terbutaline doit également être disponible pour administration en cas de bronchospasme survenant pendant la procédure. Si cela ne parvient pas à stabiliser l'animal, des corticostéroïdes à courte durée d'action (par exemple, phosphate de dexaméthasone sodique 0,1 mg/kg par voie intraveineuse une fois) devraient être envisagés.
Un équipement d'aspiration (ou une seringue de 10 à 20 ml connectée à un cathéter urinaire stérile) doit être disponible pour éliminer toute sécrétion de l'oropharynx. Si possible, les chats doivent rester en décubitus ventral pendant la procédure. Si un chat résiste à l'aspiration oropharyngée, une réinduction de l'anesthésie peut être nécessaire pour dégager efficacement les voies aériennes supérieures.
6. Technique Opérationnelle
- Chez les chats, vaporiser un anesthésique topique sur le larynx et attendre 30 à 60 secondes.
- Avancer l'endoscope jusqu'au larynx et examiner la zone (Figure 3).
- En cas d'intubation, évaluer la trachée proximale avant l'intubation. L'intubation peut être réalisée après avoir estimé la longueur de la trachée qui sera recouverte par le tube endotrachéal.
- Centrer l'endoscope pendant son avancement ; veiller à ne pas irriter la surface trachéale avec l'endoscope.
- Au fur et à mesure que l'endoscope avance, la carène ou la bifurcation apparaîtra. Le côté droit de l'animal est à gauche de l'opérateur ; par conséquent, le bronchus principal droit sera vu sur le côté gauche de l'image. Les bronches principales gauche et droite se ramifient clairement avec des bords nets (Figure 4).
- Le bronchus principal droit est aligné avec la trachée et doit être examiné en premier.
- Avancer ensuite l'endoscope dans le bronchus principal gauche.
- Évaluer les voies aériennes segmentaires et sous-segmentaires, à gauche comme à droite, de la manière la plus approfondie et systématique possible.
- Prélever des échantillons (lavage broncho-alvéolaire) si nécessaire.
- Après la bronchoscopie, continuer à administrer 100 % d'oxygène et des anesthésiques volatils pendant 5 minutes pour permettre de détecter d'éventuelles complications immédiates (par exemple, bronchospasme). Pendant la procédure et la période de récupération, la fréquence et le schéma respiratoire de l'animal doivent être surveillés en continu, de préférence par oxymétrie de pouls, afin d'observer d'éventuelles complications telles que la dyspnée et l'hypoxémie.
- Un apport d'oxygène supplémentaire peut être nécessaire après l'extubation jusqu'à ce que l'animal puisse maintenir une position couchée et que l'oxymétrie de pouls montre une saturation en oxygène adéquate (SpO2 > 95 %). Le schéma et la fréquence respiratoires doivent être surveillés à l'hôpital pendant les 12 heures suivantes.
- Si des complications surviennent pendant la récupération et que l'hypoxémie et la dyspnée ne peuvent pas être rapidement inversées par des médicaments, une réinduction de l'anesthésie pour intubation et ventilation peut être nécessaire pour augmenter l'oxygénation et permettre une investigation afin de déterminer la cause de la dyspnée.
7. Extraction de corps étrangers
- Positionnez l'endoscope à quelques centimètres en amont du corps étranger.
- Insérez le pinces de récupération en position fermée à travers le canal de biopsie (si l'espace le permet) ou à côté de l'endoscope.
- Ouvrez les pinces, saisissez le corps étranger et fermez les pinces.
- Retirez simultanément l'endoscope et les pinces.
Figure 3 : Position couchée de l'animal pour la bronchoscopie. La sonde d'intubation doit être retirée et l'endoscope inséré directement dans la trachée, sauf si un endoscope de très petit diamètre est utilisé.
Figure 4 : Anatomie pulmonaire
- Poumon droit : Lobe crânial, Lobe moyen, Lobe caudal, Lobe accessoire
- Poumon gauche : Lobe crânial, Lobe caudal
7.1 Avertissement
Une ventilation adéquate doit être assurée lors de la récupération de corps étrangers. La récupération de corps étrangers peut être très difficile. Les chirurgiens doivent être prêts à arrêter la procédure et à planifier une intervention chirurgicale si l'opération prend trop de temps. Il existe un risque de lésion des voies aériennes ou de rupture et de pneumothorax. Par conséquent, le matériel de thoracocentèse ou de pose de drain thoracique doit être disponible.
8. Complications potentielles
- Hypoxémie
- Bronchospasme
- Laryngospasme et toux
- Hémorragie
- Pneumothorax
Nick Bexfield
BVetMed PhD DSAM DipECVIM-CA PGDipMEdSci PGCHE FHEA MRCVS
Julia Riggs
MA VetMB AFHEA DipECVS MRCVS